精囊阻塞(SVO)大鼠模型

Rat Model for Seminal Vesicle Occlusion (SVO)

  • 编号DSI837Ra01
  • 物种Rattus norvegicus (Rat,大鼠) 相同的名称,不同的物种。
  • 原型物种
  • 来源丝线进行双侧精囊结扎术
  • 模式动物品系8周龄雄性Wistar大鼠,8周龄雌性Wistar大鼠
  • 实验分组验分六组:正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组
  • 实验周期2 weeks
  • 建模方法8周龄雄性Wistar大鼠50只,保持环境温度20~25℃,湿度40~70%。饲喂普通饲料适应性喂养1周后,从中随机抽取25只作为sham组,其余25只(seminal vesicle occlusion组)采用戊巴比妥钠麻醉后,腹部开15-20mm长的切口,暴露精囊后,使用丝线进行双侧精囊结扎术,之后将精囊置回原位,切口缝合,自然清醒。而sham组腹部开15-20mm长的切口,暴露精囊后,置回原位,切口缝合,自然清醒。
  • 应用疾病模型
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  • 规格 每例
  • 价格 ¥ 600
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  • 精囊阻塞(SVO)大鼠模型 产品包装(模拟)
  • 精囊阻塞(SVO)大鼠模型 产品包装(模拟)
  • 精囊阻塞(SVO)大鼠模型 Fig. The Operation chart for bilateral seminal vesicle ligation
  • 精囊阻塞(SVO)大鼠模型 Fig. The Microsurgical operation for bilateral seminal vesicle ligation
  • Certificate 通过ISO 9001、ISO 13485质量体系认证

模型评价

1.精囊阻塞对大鼠脏器系数的影响
1.1精囊大小观察
大鼠在处死前禁食12h,称取各组大鼠体重。之后经戊巴比妥钠麻醉后处死,剖腹后,暴
露精囊,摄片,观察各组大鼠精囊大小。
1.2脏器重量检测
取双侧睾丸、附睾、精囊并剥离周围脂肪组织,用冷生理盐水冲洗,除去血液,滤纸滤干,
电子天平称重。计算脏器指数:脏器指数=脏器重量/大鼠体重。

2.精囊腺的分泌功能
2.1分泌量
摘取精囊后称取精囊重量后,挤出精囊液,收入试管,电子分析天平称重记录。
2.2果糖浓度
将精囊液加入糜蛋白酶水溶液,液化后按照果糖试剂盒测定果糖浓度。
精囊阻塞大鼠模型中精囊较小,精囊分泌量降低,精囊液果糖浓度降低;

3.精囊阻塞对大鼠的性功能的影响
实验时间安排在灯暗后1小时。实验前24h雌性大鼠(10只)皮下注射苯甲酸雌二醇注射液30ug/只,实验前4h雌性大鼠(10只)皮下注射黄体酮注射液50 ug/只。灯暗安静环境下行交配实验,先将雄性大鼠放入50cm×30cm×20cm (笼子大小看具体情况可调整)的观察笼中适应10min,再向每只笼中放入1只发情雌鼠,雌鼠放入后立即观察记录雄鼠2h内的性行为情况。观察的参数为:
1.爬高潜伏期(mount latency, ML):与雌鼠同笼至第1次爬高所需的时间
2.爬高次数(mount frequency, MF):2h内爬高总次数,不管有无插入
3.插入潜伏期(intromission latency, IL):与雌鼠同笼至第1次插入所需的时间
4.插入次数(intromission frequency, IF):2h内插入总次数
5.射精潜伏期(ejaculation latency, EL):第1次插入至射精所需的时间
6.射精次数(ejaculation frequency, EF):2h内有射精获得大鼠各自射精次数
7.射精活动鼠数(rat number of ejaculation behavior, EBN):有射精活动的大鼠数
8.命中率(hit rate, HR):插入次数与爬高次数的比率
第二日灯亮后,观察雌性大鼠阴道是否出现阴道栓,发现则记为交配成功,如未发现,拭子插入阴道,涂片镜检,发现精子则为交配成功。

组织病理学

精囊阻塞对大鼠精囊组织结构的影响
精囊液彻底挤尽后,一侧精囊放入甲醛溶液中,制作石蜡切片,HE染色,在显微镜下阅片并摄片,观察病理情况。
精囊病理切片可见精囊腺腔内有许多皱襞,表面为假复层柱状上皮,细胞内含有分泌颗粒、脂肪滴及脂褐素;

标志因子水平

统计学分析

应用SPSS软件进行统计分析,计量资料以均数±标准差(x ±s)表示,采用t检验,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05表示有显

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编号 适用物种:Rattus norvegicus (Rat,大鼠) 应用(仅供研究使用,不用于临床诊断!)
DSI837Ra01 精囊阻塞(SVO)大鼠模型 疾病模型
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